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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-038 r1 ]. m1 b/ d7 M* `! L
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-036 j: S" O" }$ [+ Y: H
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
6 y' t1 a. e, h$ p$ \6 U" N  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
6 K$ R$ g" Z6 A/ v% h. T  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 1 t& T2 l- z- l7 @0 A$ Z% Z
1 材料与方法
# Y9 {  V5 C: y+ F# e! F1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 9 x- A+ x; U% Y' M; X
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果
+ X/ X; r0 o3 t8 O& H/ m: n. p' R6 f& K2 S3 B2 d( d4 e

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分组号
8 X/ M: n0 b# I因素
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179
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8 |5 ~. k; Q5 K 
& O; |& T6 u7 \/ ]& B表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
2 P- \) c& T$ P# W! C
1 \! H3 ]4 @% O* O" k$ \) t, I
4 Q* R$ B. z2 f5 \$ w6 H" x5 |" A  W; l* ~  @, Q, |

" C/ w7 G3 [% i, H; d" I$ H分组号
7 H/ A! f4 n7 Y- u# w& h因素4 V/ E1 h6 b+ S( j% h
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
7 R1 {8 J/ d: }/ A) J4 W( z) G降解测量ρ(油)/(mg.L-1)$ v9 m# f% i# a: P/ b* M
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25& X6 A5 l$ l: H1 n0 s
368
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69
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25! \  m1 x0 u1 u# Q! o: j% X, I
 
3 R9 X- X% i& {9 S 
$ A8 u+ D+ N# W1 u* R  M# _; @+ A4 D+ q1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 % M5 m, n. N: x# t) I- X
2 结果分析
; _4 O  Q3 S, D" }; D9 g: W2 d! p2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
$ X0 B8 B+ \' A表3  4株机油降解菌形态特征
% R& G; f  P3 g  K9 v4 Z# _
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菌落颜色5 _" M: L8 v! o5 p6 z/ K! S3 A- {0 ]
粉红
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淡黄
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菌落形态1 x% j! a6 F2 A9 {3 }% Y. x
不透明,微隆起,全缘,0 i! U8 k% l% X0 `9 g$ B
半透明,圆形
! m& O; i& A4 H3 r2 R半透明,圆形,隆起,
: o& g! `5 {7 O% z% Q不透明,米粒状突起,5 r: n$ j) O' @' q
9 V- W/ \7 N$ F2 l& m! v: O
 8 }. Z5 c0 |( V
光滑,有光泽
9 U+ @$ L# K8 z4 a4 @# v& E8 t光滑,较干燥
5 r% h+ W' p- _* d光滑,有光泽
8 i1 }) r% Z9 k. f$ E+ K) S) d较湿润* i& Z% J3 i& k( j  U: K! N

$ D) \5 B0 G) z. X菌体形态
9 g9 c7 e' s; v% s* s: a3 O短杆! O3 y/ n+ ~6 j5 C0 n! W- X' N
球形3 W9 @& T/ H7 F8 C; [# x& B' A
杆状
! M( h" \$ V! {. j  y9 b丝状
5 Y5 k  L) V3 y9 h: x2 ^% s8 C3 @: w- d$ V  c
菌体大小/μm
9 _+ t1 d  |% W1 m+ L3 t4 G+ Q(0.3-0.8)×(0.6-1.0)# A  l; r2 Z9 X1 T# E
Φ0.3
- k$ @5 y8 @" Q3 H(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
$ D& ^; N, V  N$ \' F0.2×(6-60)
* p) p: w+ d4 A" T" E1 V: y3 U1 |( r% W, M/ P+ M  |
革兰氏染色
! Y( q5 z3 V$ S- qG
0 ]1 E7 a/ {2 s# |G" X0 w# O3 p7 t9 J, b3 q
G/ y* R* T5 T5 N4 U, n, ?+ m5 \: O, l
G
; n+ H, ^0 C( u5 E+ w7 Q  F
' e  r! w) J; T/ s) x/ b$ E初步鉴定
8 T! @1 m- c" [2 f黄杆菌属
% W8 f& L& X" g0 J微球菌属
9 C. g, l4 F3 {8 j. c/ q假单胞菌属
! |' Z3 s1 m1 b6 Y0 W, n$ ?3 X" t酵母菌属
( U6 g* @( j- r2 W+ ^4 i2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论 6 M8 K$ j9 h2 N8 Y6 J
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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" ?8 v% i/ l7 i: F3 r2 x, x  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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