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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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: [  x  V2 l  r+ {2 P# q  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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& {  W! g& r" q/ H8 e  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-033 i1 ?- V  N7 ]" t% \: h# C
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) 9 \7 y1 P4 u# G+ {5 q8 v
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus * k/ G  y6 _  Y! u2 d0 l! p* [
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 4 v  B  h7 b& c- G+ x
1 材料与方法
: u. F" q8 D1 N3 c0 R4 ~1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 - p0 K% z* S7 h% r- ^8 z( U! q
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果
4 H4 e( D3 v; u$ C# n/ \1 `: N8 D( o2 g

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因素
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1826 A" h" w( \$ I3 T& Z; J5 E6 q3 p
1835 {+ q, |1 X  r4 s  ~
1797 O  Q, y; m0 I( w& o; g' e/ H( k
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, K* J+ d5 k5 Q, a$ l 
2 ~6 T* Y/ f) h+ b# N$ R 7 C# b7 |9 q4 X$ o( {
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 0 {: e  j3 ^) P9 g. r

1 M) r" h. g* @3 I( U( f& v0 W( N/ b# R' B$ O& S" J

8 o# |7 }5 \) @1 {
# R' ?% E: H5 P分组号, q, c9 o4 c: ]! e# Y8 P; A7 B
因素9 G( g0 D6 s1 q
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
( _& L+ c% }& P- C& V1 x0 g降解测量ρ(油)/(mg.L-1)8 \8 _4 X, n* f  ~1 h: v
) e  ]' {2 X6 H. K) ^; T
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% b' O. l3 F* |# p# F) H' ]2 ~ρ(油)/(mg.L-1)
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6.07 y  Z3 D0 D8 G2 l3 c+ l7 {* v
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25
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1 c4 H2 D& _/ |9 }1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 ! c5 P+ L4 }2 v$ \
2 结果分析
+ i* \1 Y. V4 m; K2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
! S- }9 h  y# Z3 C- |表3  4株机油降解菌形态特征
* ?& f; h2 F" x* q% i# |( K# E/ e; U
0 n+ D) C1 ?- h& S) v
  }$ f6 D, _% s( Q0 {  w  z
  b* \& p! L0 g) n  k
% u6 [; E' j! n: Y形态特征
7 w8 c3 P- D, z6 u5 u+ NZL10 T5 {# j, Y( P
ZL2) G& m6 W5 \, W% }5 e1 Q4 m
ZL3  ?4 Q- m( h" _, z. S% g: E! G
ZL4# q! t# b1 L0 G0 `7 e
2 Y! k0 _" }7 ^$ \$ {3 E
菌落颜色
: m2 B- I) N) a$ G& \$ K粉红; m4 X* A* Z2 M8 b8 [# a
淡黄
2 _' K! C! S7 {+ D7 X) a( @淡黄# E4 E  W0 P% X. u9 w! z
粉红
% T8 J" |9 }+ j* n, {3 i4 S5 @+ j3 |. s6 B4 c6 N2 t
菌落形态
; q2 ^. W5 E( @7 m$ G) F不透明,微隆起,全缘,4 N+ \: w' m1 C! B3 x7 t
半透明,圆形
( Z- M7 F/ V1 [; m7 p) l7 Y$ @半透明,圆形,隆起,
5 z# E1 y( v$ V! d不透明,米粒状突起,
3 v3 @2 A+ N0 g; ?: z5 b6 ^/ c) Y% c
 " H% V4 v: `: F9 b' S
光滑,有光泽3 F$ ]* n+ f% z/ f0 Y
光滑,较干燥/ X& Y+ l8 z- W% ~: e
光滑,有光泽" M) A) Q. l8 t% e; ]2 f& i
较湿润
/ t9 A8 W; q8 w
  e1 d1 H3 }6 i# X3 w( X8 a% t7 L0 |4 j菌体形态
. ?6 k! }3 @3 g7 H  D! A. x0 V短杆( ~8 B% t" b8 D& u: ^
球形# }! o" T0 O* Z
杆状2 C2 n. `" R& M
丝状1 n$ J4 v: ]4 Z- B) h& C2 e+ _

4 F6 D- m# R# [1 X菌体大小/μm
( ~$ y( R1 [4 I% A; R- w/ a7 s(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
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(0.5-0.8)×(1.3-5.0)' J: L  Q- F) T/ _- _  n: [, X
0.2×(6-60)
1 Q4 t3 v( c! h! \# l, C+ d( a' s1 h- C/ H$ d
革兰氏染色7 n( c; l  C3 v8 n
G
+ D# u1 X. X4 ~$ b0 z- f" pG
0 l8 f7 X/ w/ @G
0 C! c0 M0 @; }$ v. Q# eG
6 F( W- r7 i) g3 S: ]5 e5 Q/ d0 b& X
初步鉴定
( l( j2 h1 @3 S( \7 Z, z! Q$ L黄杆菌属8 J# w' E* ]! `% ?5 G, i4 U, z
微球菌属
) m/ r. B3 g; n' R- j$ }假单胞菌属
  K$ p- Z0 ^" E8 R2 U( J- Y* X酵母菌属
2 A2 K7 O9 [3 \4 s- H2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 ; I! v* c9 F8 C- |" k

" ]  f8 h3 V" S. O# @. q2 x3 结论
4 ~% F! P% C  L  |9 N  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。9 x1 {5 m+ g- Z) ?( D6 [7 ~9 b

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