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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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* s- |$ E0 \+ n- @- C9 t  I  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-037 G; x9 f: u2 h' n: s
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
% @% s4 f6 y& S; ^! z0 T- pAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) . z/ X9 j- A! z( C; D
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus - r) [5 j* e9 n* k! i- L
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 " H& C+ X& U/ [$ J% |
1 材料与方法 , x) g/ ^/ G1 E2 y
1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 ) ?% k7 P; q3 U, [7 {
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 + e6 a" A. P4 `
" O3 T- f  N& H% K& v, N

' a7 N/ [4 W+ `2 w& F. k, h* K8 Q* Y, i+ Q8 k) T

$ r- V6 E+ j9 A: R7 o: O分组号
. F; S- C1 H5 l5 m& W$ F+ F  X因素1 K+ L! m4 d6 }+ y' l
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
& q- j( I1 E) f% j7 P; b降解测量ρ(油)/(mg.L-1)& J+ H; ]& \; ]
( I7 ]/ @& j5 P
温度/6 f& L! i: y& u8 P2 m# S% R
ρ(油)/(mg.L-1)
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' R: x0 }' w/ Q# O, |
6 Z, T$ r6 w& Q" q5 X4 A$ x1
9 d- Y  D  r' S( Y9 D+ d- O) U253 G9 R" q+ F* W3 T  K* Y$ N1 j* L
424
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192
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8 ~6 e9 M5 q/ H! g
2, X/ N5 z2 H/ U0 n) p9 a7 O  A
250 m, ], `0 Y, u6 S$ b" a* Z
6802 p7 V& C4 n0 L( K% X6 n* J
7.0/ g" j, @/ y0 G* W
416, o; y# e6 u9 B5 N) F3 h3 x
264
& {3 g# o" }2 d! k9 [$ B3 k* \; Y
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9.0
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424
5 w4 y2 g) d9 _$ F7.0
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173) w4 ]7 k9 l) c( @! t" s

. q6 h4 y8 ^9 c* z6
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5.0$ n! \' {- x! s/ @
654# I. G  d# ]8 n# |& r) v+ }
170
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35
5 J' Q% ?# `8 W5 I' p424
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; Y, O0 J8 C3 G/ z7 L127
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' t* _$ Z; r6 Q  w+ K# x( x5 S680) e; m  k! [: w* N/ ]6 S* o
5.0" A- v, _1 g- K7 Z, @6 n5 B
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( V- i" c' G8 Y# s7 h307" X% Y, g; p& c& i( r$ Z; N8 n& D
433+ ~5 T( n, i" P" I! f9 a4 B
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171& k2 D0 C! V: {  S: v5 B
 
) e# X; E- T0 _( x9 J' L  _  T 
; k: Z9 V8 ?! f7 m/ F9 m& V  E* u) S' J( ~' `& F6 g
K2
3 V  H! y$ d: N6 @" h182
* g- m+ Y2 w. [! j7 d7 G" O183
* M7 C9 Z% G6 @) i( u179
$ F/ `9 H2 q! E; ] 
/ q. U# Q. J! [) ?. {9 J% ^5 r 
# u. S7 C! V! ^' o( X" I# d
# L9 Q5 f1 n3 L& |K3
+ Q2 G7 g$ V' Z3 T102" k. r( k, Z/ O, o( M" j) J/ l: R
144
+ q  ~8 Q- o$ P5 r1 s165
5 s  p/ l, j  I. r; E 6 n3 |# p9 y/ V$ m& R# S2 T
   w& h! ~7 ?/ v. w
, p0 e2 S, s# V/ r! j& q
R
0 o. H) ^6 U4 r& o128
# l4 e% D" j- N' S447 f+ s6 ]  ^! ?, v" Z7 l( J) X
14+ E# d8 D/ S1 X' G9 r# N
 , j' F/ N: ]& s& s# g% B) B
 / S  N0 S7 R2 {1 D6 B$ p
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 1 X% h4 Y) E4 @6 H0 J( w5 Z
4 `2 s1 f! X) k& _7 w6 T  I

6 e: |+ e+ Q, K) Q6 n8 S: M# P$ r* g

/ C, b) }8 X9 [% K分组号
, g) w% g# E, F' f9 A- g; `9 R因素+ }# Q3 j- w/ i: f/ x5 q: I' r
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)$ s6 ?6 U1 N* x, g
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
7 f+ t+ Z4 n/ g
1 B- v9 W' a: ~$ E温度/7 W+ t0 l  b, g, [& D
ρ(油)/(mg.L-1): T$ B8 }" [0 |5 ^4 f
pH值
: d) I% ]& z& I8 P0 m# ?8 ^* m$ f7 E* l2 n; ^2 c
1+ X( c; s4 X5 g" W* M0 v
25
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4.0, M# k& l# m, {& r* J: d! H4 v
69
$ a& o5 |: S$ z% N7 s299
3 D$ r0 X6 J, f+ X% I* X3 S0 l5 E3 b2 X& G
2
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. y: n. O9 c8 E& M0 R574$ w6 Q7 H3 m6 b
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0 Z8 f2 c2 C! T
3
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767" e- J+ p7 a; m# Y8 N8 {: V
8.0
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7 Y( G' A; m- G288( j0 ?6 M* t0 l. w# h$ v

- T5 V  P( t* w6 `& p! r* r9 n. g4+ T6 A8 \7 _2 i1 |/ V) Y
30, ]; q/ c- m, i
368( ?& f0 c6 h* a- g+ O
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314
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296
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226
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- V. O' c+ p& B264
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8 i4 n& i$ s0 L5 L: h/ o% n738 n( K' M! [5 h( C& j1 a. U
16
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. H, ?8 [$ M5 u4 d- g8 e 0 n+ N( }# Y& L1 L$ a
 
  Z' V9 f& r+ s5 W1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
3 R  h1 u. L3 ^- O8 A2 结果分析
7 c: \0 X! \& p2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 ) h: a( ~: d' h$ p3 d$ A8 U& }
表3  4株机油降解菌形态特征
" [" R/ V* l' J& b; f. Y7 I6 Y; c: x3 |( |* O
* O, b$ q) P5 ^- ]6 ?! k: n
7 ^! B0 o( W& \* H! N( y5 l$ M
8 S4 o: ?- z1 J) k  P) p4 x3 m3 e
形态特征
1 f6 l1 i$ r7 n8 r: M1 zZL1; `+ V( C) ]- o) l; H" r, X1 M
ZL2
& F( a) _& Y+ y' ^ZL3
* k# \4 D" G- @4 yZL4' B" x; I7 t" W  g1 R
$ X; p0 _! W: p1 @0 u8 i
菌落颜色
5 {9 I8 O8 \6 W( ^粉红7 T7 [% u- _! [, e" v9 S
淡黄4 u" ^$ \& b' Q- R! ?
淡黄$ S+ V. _3 I% S( M+ J/ ]
粉红" d; S: g' ~) ?8 u# H
2 `: W4 S; E4 O. c! Z+ \
菌落形态* D5 J0 y/ \) B: }6 E9 Q+ \
不透明,微隆起,全缘,7 L9 S# S4 _; ]- l
半透明,圆形
, P" ~) Q  w$ T& V; k半透明,圆形,隆起,
( _( D4 Z" }% e5 E( V; B* ?& x不透明,米粒状突起,/ t" @- @5 E6 S- k; g. e7 r
0 @. Q. p$ k- U! R$ q) s# a
 
5 C. N2 i, E$ L+ U' u光滑,有光泽1 x. A1 v+ N! w# Q/ r+ R- D
光滑,较干燥% q' ]- y) R+ e. W
光滑,有光泽
, V% K* Y# ^9 J( v+ g) \较湿润
- W9 c7 m0 d$ R( l& f% t7 s9 F8 b* U, T0 s+ l
菌体形态7 C# ?+ z# p- q
短杆$ `) @5 Y% M  X/ K& u: N
球形
6 P/ S7 G& {, f' s3 |! f; z, P  T2 G杆状7 ~9 t+ }% N1 b+ [) v* _
丝状9 N* J* e/ f+ w8 E

: a, K% a+ ]  m8 C% t% G4 M' Z菌体大小/μm- O* R+ J3 w# r7 `- S/ @
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)' T% r4 g9 v# Z2 e' J
Φ0.3
: H3 `% a# C" O  [" g4 G! S(0.5-0.8)×(1.3-5.0)2 v( z! Z0 ^4 E  i
0.2×(6-60)  k: O% f/ D! |; d! Z) j6 V, L4 j! b8 ?
. h9 `! \3 w2 y  s8 t# S% i
革兰氏染色/ B# I4 v4 s- Z$ m8 |- Q, v5 E
G
0 b+ `2 R! s0 ?- ?* O# c2 SG
" P9 Y  S4 i" S  K) A( G1 V+ sG5 s; S3 M5 y  s7 V( d4 H
G. c( q( q; d8 e3 i

0 l6 C; G$ C6 r$ A初步鉴定/ V4 {. G8 g5 w9 W; L
黄杆菌属- S- w$ ?% U9 E( f, b1 |  M) C- E
微球菌属8 _* O% Y) n) f
假单胞菌属- O2 j6 I1 \7 j% I3 U: r. r6 h
酵母菌属* v1 [8 K3 d' N, }
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 * N2 ?! [( s: Y" M9 M2 Q
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3 结论
- ~  A9 F4 `" w  C+ F  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 8 R6 O  Y& z7 }. O
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* `' E7 `/ g7 d# Q* q7 m6 a! T  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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