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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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# J3 u  m/ K; Z4 f1 B2 ?/ D' ^* M

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, W! R5 p3 X1 E8 ^1 @# q  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03( Q8 d3 x" B! Q5 @$ i
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
4 c/ D2 U, R8 q. B: t9 I$ l8 f  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
. [5 N' r3 q# S# I( a( y; @  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 . `& C5 F% c: `% h! B+ t' G7 `- v( H
1 材料与方法 * ?- D2 W7 k9 T
1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 3 o" D& p/ D1 P; t1 m. m& U
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 1 |! h6 {+ \" P. k
) p* L: k, k. e

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1 A. W3 |7 v# A- I: ~) {) _3 d* W! S2 D
分组号
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144
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+ q5 p+ ^8 }7 l; w3 x+ }4 |* d 7 ~1 B0 k: V; P  M$ b2 X
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 4 o1 C: E5 p: w7 B
* A( ^, T- Y! h9 ~$ ~7 y8 i
! _* C2 S7 j5 o$ m* S. i

7 b7 y& b& c3 O4 W4 B8 T2 ]* Z# O8 q
分组号" o7 d+ v4 @  H
因素6 q1 j& j: T5 A3 [# S6 l9 C
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)0 w$ x* L  m  B1 ^9 r
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)8 H+ L! A& T, ^, d3 `, X

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ρ(油)/(mg.L-1)
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# c4 A, O7 q: t* a& t) b9 a
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25
2 o9 o. S! }) F& Y8 M7 _0 P* V+ V% d 3 M+ R1 b) B0 J$ \
 
; S' t0 p# P7 M$ n" J9 `& q  e4 Q1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
/ Y" S+ H# v1 a8 n* v4 h8 O5 t+ B0 f3 d2 结果分析
2 N, [( X& N4 Q" I9 {: ^2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。   m4 r. j7 K/ s0 r5 `% v
表3  4株机油降解菌形态特征 8 [6 B1 _% }+ L

1 y  q2 T# ^* U+ I4 x& c, W
4 M8 ?4 K$ A# w- ?& l/ I4 j/ S: f4 H- W. e) H$ N
" Z& ?2 g/ x3 y1 u4 F
形态特征
8 m) F4 o1 n# `% M+ I3 }ZL1; G* Q4 k- U) p8 Q7 P: ~% w
ZL2
/ F( i4 ~6 i2 F9 s* O' v- n3 WZL3
9 n& B* ~2 R! j6 q7 pZL4* j% C; b) m4 x, ]' ~

* V$ x1 r+ ^2 c* T4 v2 N1 V6 [菌落颜色9 P: c8 b/ B( U3 M$ k2 D3 v! G
粉红
: t! o) v9 u9 u) y) l+ V! F淡黄$ z8 [+ {. s; d3 W- [* Q
淡黄
. b/ u9 Y+ x# ^2 p9 l( ?粉红' D9 b. B& F. L9 A4 ?3 i

2 q4 u, \* N2 g8 ^菌落形态
' ^/ R/ m: X& B% R! g8 [- \  E不透明,微隆起,全缘,
" [2 A: @4 t% c/ R' X半透明,圆形  j7 z$ x" m- p& F5 D/ v3 B2 r
半透明,圆形,隆起,
+ z/ m. a0 E5 ]不透明,米粒状突起,. ], M. F. `2 I' t9 O

0 f3 P& F, Z4 R: [, H , |' H$ b& Z+ K+ _
光滑,有光泽
$ W! k  p/ b4 w; [5 K4 Q光滑,较干燥1 X: b' W. R) V, j' ]- @
光滑,有光泽
( E  i9 H& Z8 N. \, L6 @+ S  _较湿润. l0 a" s" g, k" E& ~& [6 c9 G0 w
3 L; V' ~3 ^5 a7 M# _
菌体形态
$ Q- r/ T1 N' z6 k短杆
% s! ?* V8 z6 B+ X: |8 }$ n0 @' P球形9 a! F+ U: d. M) ^; b
杆状9 }1 Q* ~0 {4 o  x8 Q
丝状. w, U# ?, J) |
4 d2 r3 u" |  {! I. I8 N
菌体大小/μm! |6 D7 P) T$ n! t. l9 B3 B7 k" @" X
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)! O% }4 t8 g2 @' `. e1 e
Φ0.3& E- l% X2 c# D9 D4 u$ |: I5 \
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
' A% _$ r, q- u+ I2 M. Y0.2×(6-60)
+ a2 G! D( z7 j/ ]5 @" _
0 w6 h) t9 t# g: M& V革兰氏染色: y1 N) U. [6 e9 Q. [" J
G
, A+ ]) b1 R; O/ u! x# g5 YG
. ?. b: B3 R& _' E, |- I" O6 iG( D3 b) a$ J2 _3 Y4 @
G
2 p' |+ ?) G' {$ K0 b0 M
; ?1 y3 n7 P+ s+ y, J初步鉴定1 H. n" M+ x5 t" _5 c
黄杆菌属) Z- b8 X, I( T7 O) s2 M
微球菌属
( [; P4 _! C/ u9 j假单胞菌属# w" z  I2 Q1 K8 A" E8 D1 a
酵母菌属2 q. w: \/ k5 u$ m& e# V5 [
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 : c, D- P* @& h% U$ [4 I
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3 结论 ) z$ z. Q) P! ]# O
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 1 i6 K% t7 K0 X% n) \
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; K3 g) A0 R/ C/ l  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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